MUESTRA

COMENTARIOS

Esputo

a. Instruya al paciente con toda claridad

b. Lugar para producir la expectoración debe estar bien ventilado y con privacidad

c. Si se recoge en la casa, que sea transportada al laboratorio lo más pronto posible

d. Asegúrese de que la expectoración sea adecuada

e. Antes de que el paciente inicie el tratamiento con antibióticos

f. Envase adecuado sin preservantes ni fijadores

Criterio de muestra adecuada: más de 20 leucocitos / campo de 10X (en caso de pacientes leucopénicos puede no haber leucocitos) y menos de 25 células epiteliales/campo de 10X

Lavado gástrico

a. Tres muestras en días sucesivos

b. Volumen : 10 ml (3 ml en niños)

c. Toma matinal, en ayunas

d. Sondeo gástrico

e. Envío inmediato al laboratorio

f. Utilice un envase especial (Na2CO3 –un milígramo por cada mililitro de jugo gástrico-)

g. Procese de inmediato

h. No se hace frotis directo, solo del sedimento luego de la centrifugación

i. Rechace muestras sanguinolentas

Lavado bronquial

j. Toma exclusiva para médicos

k. Cantidad 5 ml o más

l. Colecte en las 24 hrs. posteriores al lavado toda expectoración espontánea

m. Haga el frotis directo y luego decontamine para inocular el medio

de Löwenstein Jensen (LJ)

n. Posibles falsos (+) por Micobacteria saprófitas

Hisopado laríngeo

o. Toma exclusiva para médicos

p. Trabaje con pinzas estériles

q. Descontamine, sedimente, realice el frotis y siembre el cultivo

Orina

r. Tome 3 muestras, en días consecutivos

s. Toda la orina de la primera micción matinal, previa higiene genital externa

t. Utilice un envase estéril

u. Procese solo muestras de más de 40 ml

v. Procese de inmediato o refrigere

w. Agregue 1 milígramo de bicarbonato de sodio por cada 10 ml de orina

x. Sedimente y siembre el cultivo

y. No haga frotis

Sangre

z. Recoja con precauciones de bioseguridad

aa. Colecte en vacutainer heparinizado

bb. Mezcle y siembre 0.2 ml rápidamente

cc. Nunca utilice EDTA como anticoagulante

Líquido

cefalorraquídeo

dd. Toma exclusiva para médicos

ee. No menos de 2 ml.

ff. Utilice un tubo estéril, sin anticoagulante

gg. Sedimente, realice el frotis y la inoculación de medio

Líquidos corporales

hh. Toma exclusiva por médicos

ii. Volumen entre 10 y 15 ml

jj. Procese todas las muestras tomadas

kk. Colecte en un tubo estéril con heparina

ll. Sedimente, realice el frotis y la inoculación de medio

Biopsias

mm. Toma exclusiva por médicos

nn. Fraccione la biopsia con instrumental quirúrgico estéril en un mortero de porcelana (previamente esterilizado).

oo. Agregue una pequeña cantidad de arena y agua destilada estéril y trabaje la masa con el pistilo del mortero.

pp. Obtenga una suspensión que pueda ser inoculada directamente en el medio Löwenstein Jensen.

qq Realice el frotis

rr . Si la muestra no cumple con las condiciones de esterilidad señaladas, sométala al procedimiento de descontaminación.

MUESTRA

COMENTARIOS

Esputo

a. Instruya al paciente con toda claridad

b. Lugar para producir la expectoración debe estar bien ventilado y con privacidad

c. Si se recoge en la casa, que sea transportada al laboratorio lo más pronto posible

d. Asegúrese de que la expectoración sea adecuada

e. Antes de que el paciente inicie el tratamiento con antibióticos

f. Envase adecuado sin preservantes ni fijadores

Criterio de muestra adecuada: más de 20 leucocitos / campo de 10X (en caso de pacientes leucopénicos puede no haber leucocitos) y menos de 25 células epiteliales/campo de 10X

Lavado gástrico

a. Tres muestras en días sucesivos

b. Volumen : 10 ml (3 ml en niños)

c. Toma matinal, en ayunas

d. Sondeo gástrico

e. Envío inmediato al laboratorio

f. Utilice un envase especial (Na2CO3 –un milígramo por cada mililitro de jugo gástrico-)

g. Procese de inmediato

h. No se hace frotis directo, solo del sedimento luego de la centrifugación

i. Rechace muestras sanguinolentas

Lavado bronquial

j. Toma exclusiva para médicos

k. Cantidad 5 ml o más

l. Colecte en las 24 hrs. posteriores al lavado toda expectoración espontánea

m. Haga el frotis directo y luego decontamine para inocular el medio de Löwenstein Jensen (LJ)

n. Posibles falsos (+) por Micobacteria saprófitas

Hisopado laríngeo

o. Toma exclusiva para médicos

p. Trabaje con pinzas estériles

q. Descontamine, sedimente, realice el frotis y siembre el cultivo

Orina

r. Tome 3 muestras, en días consecutivos

s. Toda la orina de la primera micción matinal, previa higiene genital externa

t. Utilice un envase estéril

u. Procese solo muestras de más de 40 ml

v. Procese de inmediato o refrigere

w. Agregue 1 milígramo de bicarbonato de sodio por cada 10 ml de orina

x. Sedimente y siembre el cultivo

y. No haga frotis

Sangre

z. Recoja con precauciones de bioseguridad

aa. Colecte en vacutainer heparinizado

bb. Mezcle y siembre 0.2 ml rápidamente

cc. Nunca utilice EDTA como anticoagulante

Líquido

cefalorraquídeo

dd. Toma exclusiva para médicos

ee. No menos de 2 ml.

ff. Utilice un tubo estéril, sin anticoagulante

gg. Sedimente, realice el frotis y la inoculación de medio

Líquidos corporales

hh. Toma exclusiva por médicos

ii. Volumen entre 10 y 15 ml

jj. Procese todas las muestras tomadas

kk. Colecte en un tubo estéril con heparina

ll. Sedimente, realice el frotis y la inoculación de medio

Biopsias

mm. Toma exclusiva por médicos

nn. Fraccione la biopsia con instrumental quirúrgico estéril en un mortero de porcelana (previamente esterilizado).

oo. Agregue una pequeña cantidad de arena y agua destilada estéril y trabaje la masa con el pistilo del mortero.

pp. Obtenga una suspensión que pueda ser inoculada directamente en el medio Löwenstein Jensen.

qq Realice el frotis

rr . Si la muestra no cumple con las condiciones de esterilidad señaladas, sométala al procedimiento de descontaminación.