COLEGIO DE MICROBIÓLOGOS

Y QUÍMICOS CLÍNICOS DE COSTA RICA

La Junta Directiva del Colegio de Microbiólogos y Químicos Clínicos de Costa Rica con base en los artículos 84 y 91 de la Ley General de Salud, en sesión Nº 04:2005-2006 del 4 de abril del 2005, procedió a tomar el acuerdo 9.6 para establecer el Equipo y Materiales Mínimos de un Laboratorio (No Especializado en Alimentos) que Procese Aguas o Alimentos Utilizando la Técnica de Petrifilm 3M.

EQUIPO Y MATERIALES MÍNIMOS DE UN LABORATORIO QUE

PROCESE AGUAS O ALIMENTOS

Área de Recolección de Muestras:

1.         Bolsas Estériles con tiosulfato de sodio.

2.         Cucharas, cuchillos, tenedores estériles.

3.         Bajalenguas estériles.

4.         Torundas o hisopos estériles o bien bolsas estériles con esponja.

5.         Placas de petri (vidrio o desechables) con Agar Standard o agar Papa Dextrosa (o bien indicar el medio de cultivo que utilizan para muestreo de H y Lev).

6.         Cubrecabello, guantes y tapabocas.

7.         Marcadores de tinta indeleble.

Para transporte de muestras:

1.         Hielera.

2.         Hielo mágico o bolsas refrigerantes.

Planta de Laboratorio:

1.         Balanza granataria para pesar muestras y medios (calibrada).

2.         Papel para pesar los medios sin hidratar.

3.         Agua desionizada (preferiblemente) o agua destilada.

4.         Cristalería: tubos de ensayo, probetas, pipetas graduadas, erlenmyer.

5.         Jabón líquido para lavado de cristalería.

6.         Bactericida (alcohol 70 grados).

7.         Papel Kraft.

8.         Plantilla de gas o eléctrica.

9.         Autoclave para cristalería limpia y medios de cultivo (en un área fuera del área donde se realizan los cultivos de las muestras).

10.        Una autoclave pequeña (tipo olla de presión para cristalería y material sucio).

11.        Placas de Petri.

12.        Incubadora de 37 grados.

13.        Incubadora de 44.5 grados centígrados (o baño de María exclusivamente a esa temperatura).

14.        Microscopio.

15.        Porta y cubreobjetos.

16.        Jarra de anaerobiosis.

17.        Asas bacteriológicas.

18.        Refrigeradora (temperatura 4 grados C).

19.        Congeladora para custodia de muestras.

20.        Campanas de Durham.

21.        Peachímetro calibrado.

Material para descarte:

1)         Bolsa de polipropileno identificadas para contener material infeccioso.

2)         Bolsas de polietileno (para material que no amerita autoclavarse).

3)         Carrito para transportar las bolsas de descarte.

4)         Recipiente para descartar material punzo-cortante.

5)         Basureros con tapa.

Documentos:

1)         Manual de Buenas Prácticas de Laboratorio.

2)         Manual de Procedimientos o Técnicas (en el caso de laboratorios que trabajen con las técnicas del BAM, preferiblemente tenerlo en la Bibliografía).

Equipo de Bioseguridad del Personal:

1)         Gabacha.

2)         Guantes desechables.

3)         Extintor.

4)         Botiquín básico.

5)         Anteojos de seguridad.

6)         Tapabocas.

Reactivos y medios básicos:

Laboratorio de aguas:

1)         Caldo Bilis Verde Brillante.

2)         Reactivos para Gram.

3)         Agua peptonada.

4)         Caldo lactosado.

5)         Agar Papa dextrosa.

Laboratorio de Alimentos en General:

Los anteriores más:

6)         Caldo Listeria con suplemento.

7)         Agar Baird Parker.

8)         Agar Bilis Rojo Violeta.

9)         Agar Oxford o Palcam.

10)       Agar Rambach/Hecktoen.

11)       Reactivo para Oxidasa.

12)       Peróxido de Hidrógeno.

13)       Reactivo de Kovacs.

14)       Medio Indol.

15)       Otros medios para bacterias específicas (por ejemplo, si trabajan esporulados, etc).

Notas generales:

Los reactivos deben estar en un gabinete o área destinada para los reactivos, debidamente rotulados con "fecha de expiración a la vista".  En caso de que el laboratorio de alimentos sólo utilice la técnica de PETRI film 3M el área de recolección de muestras, la planta de laboratorio y el equipo de transporte deberán contener lo siguiente:

Área de Recolección de Muestras:

1)         Bolsas estériles con tiosulfato de sodio (si procesa aguas).

2)         Cucharas, cuchillos, tenedores estériles o bajalenguas estériles.

3)         Torundas o hisopos o aplicadores estériles o bien bolsas estériles con esponja.

4)         Marcador de tinta indeleble.

Para Transporte de Muestras:

1)         Hielera.

2)         Hielo mágico o bolsas refrigerantes.

Planta de Laboratorio:

1)         Balanza granataria para pesar muestras.

2)         Placas 3M Petrifilm a conveniencia: RBT, H y L, Staph. aureus, etc.

3)         Incubadora a 37 grados centígrados.

4)         Incubadora a 44.5 grados centígrados.

5)         Autoclave pequeña o tipo olla de presión para autoclavar plaquillas 3 M usadas.

6)         Bolsas debidamente rotuladas para descarte del material inoculado (punto 5).

7)         Agua destilada, o desionizada.

8)         Agua peptonada donde se hacen las diluciones de las muestras (a partir de Triptona, o caseína-peptona-triptona.

9)         Cristalería adecuada para las diluciones: pipetas de vidrio o micropipetas, botellitas dilutoras o bolsas, tubos estériles.

10)        Lector o contador de colonias con luz incorporada o sustituto.

NOTA: Si existe un contrato con empresas externas que realicen el Manejo Profesional de Desechos el punto 5 obviamente puede eliminarse".